La première
multiplication clonale d'orchidée a été obtenue en
1949 par Gavino Rotor*. En dépit d'un taux de réussite de
89%, sa méthode in-vitro employant le milieu C de Knudson ne trouva
aucune application. Cette première méthode a subi depuis
de nombreuses modifications et le commerce offre des produits spécialement
préparés donnant des résultats très variables
selon les clones multipliés. Il importe de choisir dans tous les
cas des hampes florales vigoureuses avec des bourgeons non apparents,
c'est du moins l'avis de la majorité des auteurs, d'autres préférant
travailler avec des tiges portant quelques fleurs épanouies.
Gavino Rotor
a pour cela utilisé comme matériel de départ une
hampe florale de Phalaenopsis et du milieu C de Knudson. Il a lui-même
décrit sa méthode comme suit :
« Après
que les fleurs aient été retirées, la hampe florale
est rincée à l'eau, puis à l'eau distillée.
Les bractées couvrant les bourgeons sont retirées. Chaque
bourgeon est prélevé avec une partie de la hampe florale,
2 cm au-dessus, 2 cm au -dessous. Normalement, 1 ou 2 noeuds de la base
de la tige sont dépourvus de bourgeon.Ils sont écartés.
La partie supérieure qui porte les fleurs est aussi inutilisable.
Entre 4 et 6 bourgeons sont ainsi récupérés**.
Les fragments
de tige sont stérilisés à l'hypochlorite de calcium.
On prépare la même solution que pour la désinfection
des semences d'orchidées (7 gr d'hypochorite pour 100 ml d'eau
distillée, agiter vigoureusement à intervales pendant 5
ou 10 minutes, decanter et filtrer). L'immersion dure de 2 à 5
minutes***.
Quelquefois
la croissance ne se manifeste pas avant deux mois. En général
les bourgeons les plus forts donnent les meilleurs résultats. Sur
65 bourgeons cultivés, 7 n'ont rien donné. Les racines apparaissent
quand deux ou trois feuilles se sont développées.»
L'habitude a
été prise de tamponner les fragments de tige avec un coton
imbibé d'alcool à 95%. Après 20 minutes, la solution
de NaOCl est remplacée par de l'eau stérilisée. Il
faut au moins faire trois rinçages. Les fragments de tiges sont
conservés ou non dans l'eau jusqu'au moment d'être recoupés
pour la plantation. On ne conserve que des sections de 1 à 2 cm
avec évidemment le bourgeon au milieu. Une température de
25 à 30°c favorise la croissance. Le milieu C de Knudson, ainsi
que les milieux en usage pour les semis, sont utilisables. Rotor posait
ses tiges sur le milieu de culture, on préfère maintenant
les planter verticalement tout en laissant les bourgeons en dehors du
mélange. Rotor a obtenu une croissance active après deux
semaines.
Les conditions
de conservation des cultures sont assez simples à réunir
: Une température de l'ordre de 22 à 25°c, un local
sain, et un éclairage fourni par un néon de type grow-lux
conviennent tout à fait. Plusieurs évolutions sont possibles
en fonction des plantes multipliées, mais aussi de l'époque
du prélévement. Voir les
différentes possibilités en cliquant ici.
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Quelques
améliorations ont été apportées au modèle
de base. Ainsi, l'enrichissement du milieu de Knudson avec 25 à125
ppm de BAP (Benzylaminopurine) permet l'obtention de plusieurs plantules
à partir d'un même bourgeon. On observe le développement
de plusieurs pousses en deux ou trois mois. Les racines se forment
plus tard lorsque l'on transporte les plantules sur le même
milieu, sans hormones, et contenant de la banane fraîche ou
sous forme de farine.
On
peut utiliser différents types de récipients en verre
pour effectuer la plantation, Erlenmeyer, tubes à essais,
flacons à plasma etc... Ceux-ci doivent être remplis
au ¼ de leur capacité environ de milieu de culture.
Il
faut utiliser des tiges développées de préférence
et choisir les bourgeons dormant situés à la partie
supérieure. Généralement, les résultats
obtenus ainsi sont meilleurs.
Un autre procédé de désinfection
consiste, dans un premier temps, à stériliser les
fragments de tiges 20 minutes dans une solution à 1 % d'hypochlorite
de sodium, en agitant périodiquement.
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Ci-dessus,
mise en culture récente d'un fragment de hampe florale. Le
bourgeon commence sa croissance.
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Après plusieurs
rinçages à l'eau stérile, les fragments de tiges
sont placés dans des boites de Pétri, et, alors seulement,
on retire les bractées en utilisant une lame stérile. Les
fragments de tiges sont alors redésinfectés dans une solution
à 0,5 % d'hypochlorite, et agité périodiquement,
pendant 10 minutes. Pour les rinçages suivant on utilise de l'eau
distillée stérilisée.
* Il faut noter que Gavino Rotor peut être
considéré comme le véritable père du clonage
in-vitro des orchidées. Son compte-rendu d'expérience est
paru en 1949 dans le bulletin de la Société Américaine
d'Orchidophilie ( pages 738-739). Il est totalement passé inaperçu
pour les professionnels. Gavino Rotor était alors un éléve
de Knudson.
**Cette méthode est toujours valable,
mais on prélève des bourgeons de préférence
avant l'épanouissement des fleurs.
***Une immersion de 2 à 5 minutes
est probablement trop courte pour décontaminer complètement.
Quinze à 20 minutes constituent une durée plus appropriée.
L'hypochlorite de sodium (NaOCl) à 20 ml pour 100 ml d'eau est
maintenant plus fréquemment utilisé.
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